О потенциальной опасности нетоксигенных штаммов холерных вибрионов, содержащих гены токсин-корегулируемых пилей адгезии


Титова С.В., Монахова Е.В.

Ростовский-на-Дону противочумный институт Роспотребнадзора
Токсин-корегулируемые пили (TCP) известны как ключевой фактор адгезии Vibrio cholerae и как рецептор для фага CTXφ, несущего гены холерного токсина (ctxAB), наличие которых является показателем эпидемической опасности штамма. Из воды поверхностных водоемов, от больных и носителей периодически выделяются ctxAB--штаммы, содержащие ген структурной единицы TCP (tcpA). Они рассматриваются некоторыми авторами как «потенциально эпидемически опасные» на основании возможности их реверсии в токсигенные в результате специфической трансдукции, что вполне реально на эндемичных по холере территориях со слабо развитым санитарным обеспечением, где водоемы достаточно часто контаминируются токсигенными штаммами, способными к выживанию в окружающей среде и вирогении. В обзоре приведены аргументы в пользу нецелесообразности придания такого статуса ctxAB-tcpA+-штаммам, выделяемым в России и других неэндемичных регионах, в связи с существованием множества альтернативных путей горизонтальной передачи CTX и отсутствием постоянной циркуляции токсигенных штаммов – доноров вирионов CTXφ для трансдукции и/или ДНК для трансформации. Также обсуждаются роль ctxAB-tcpA+-штаммов в этиологии кишечных инфекций и «взаимозаменяемость» факторов патогенности, включая TCP.

Токсин-корегулируемые пили (TCP) являются одним их ключевых факторов патогенности Vibrio cholerae, обеспечивающих колонизацию кишечника за счет адгезии микробных клеток к энтероцитам, а также образования микроколоний на начальных стадиях инфекции [1, 2]. В основном присутствие в геноме генов, ответственных за продукцию TCP (кластер tcpA-J в составе острова патогенности VPI), свойственно штаммам, несущим гены холерного токсина ctxAB в составе интегрированного в геном профага CTX. По наличию генов ctxA и tcpA (структурной единицы TCP) судят об эпидемической опасности того или иного штамма. Вместе с тем как на эндемичных, так и на неэндемичных по холере территориях из воды поверхностных водоемов, от больных и носителей периодически выделяются ctxAB-tcpA+-штаммы [3, 4]. Поскольку в настоящее время общеизвестна способность TCP служить рецептором для инфекционных вирионов CTXφ и играть таким образом важнейшую роль в его горизонтальной передаче [5], такие штаммы рассматриваются некоторыми авторами как «потенциально эпидемически опасные» на основании возможности их реверсии в токсигенные в результате специфической трансдукции [3, 6–8]. По всей видимости, данная точка зрения основана на гипотезе, предложенной S.M. Faruque и соавт. еще в 1998 г. [9], согласно которой ctxAB-tcpA+-штаммы, присутствующие в небольших количествах в объектах окружающей среды, при попадании в кишечник человека могут быть инфицированы фагом CTXφ и стать токсигенными. После размножения этих токсигенных клонов в кишечнике и выхода из организма хозяина их концентрация в водоемах возрастает, что и приводит к эпидемическим вспышкам холеры. Таким образом, указанные авторы полагали, что возникновение и селекция новых эпидемически опасных клонов в равной степени определяется факторами внутренней среды макроорганизма и внешней водной среды. К последним они относили оптимальную температуру воды, ее осмотические характеристики и влияние солнечного света, с которыми связывали сезонность вспышек на эндемичных территориях. Однако как в этой, так и в большинстве других публикаций, начиная с первого описания CTXφ [10], неоднократно подчеркивалось, что «традиционная» (TCP-зависимая) передача CTXφ вибрионам Эль-Тор происходит преимущественно in vivo, поскольку у представителей этого биовара (в отличие от классического) пили TCP почти не образуются вне организма хозяина, и в дальнейшем практически все авторы [5, 11 и др.] эксперименты по трансдукции проводили в основном в кишечнике мышей-сосунков. Отсюда следует, что для успешной реверсии нетоксигенных холерных вибрионов в токсигенные необходимо одновременное попадание в кишечник ctxAB-tcpA+-штамма и инфекционных вирионов CTXφ. Такая ситуация вполне реальна на эндемичных территориях, где в связи со слабо развитым санитарным обеспечением (либо его отсутствием) открытые водоемы достаточно часто контаминируются токсигенными штаммами, способными к выживанию в окружающей среде и к вирогении. При этом их концентрация должна быть достаточно высокой, поскольку размножение CTXφ происходит без лизиса клетки-хозяина, и число фаговых частиц обычно невелико, хотя и может заметно увеличиваться под действием солнечного света [12]. Напротив, в благополучных странах с умеренным климатом, в том числе и в России, где в последнее время отдельные случаи холеры являются исключительно завозными, а обнаружение токсигенных штаммов в объектах окружающей среды носит единичный характер, вероятность одновременного заражения людей ctxAB-tcpA+-штаммами и вирионами CTXφ крайне низка. Поэтому мы считаем нецелесообразным придавать ctxAB-tcpA+-штаммам, выделяемым в нашей стране, статус «потенциально эпидемически опасных».

Другим аргументом в пользу нашей точки зрения является тот факт, что после обнаружения CTXφ было описано еще несколько фагов, успешно осуществляющих горизонтальный перенос генов ctxAB и всего профага CTX от токсигенных штаммов в клетки нетоксигенных, независимо от присутствия генов tcp-кластера. Как видно из табл. 1, фаг CP-T1 использует в качестве рецептора О-антиген, а рецепторами филаментозных фагов являются маннозо-чувствительные пили адгезии MSHA, которые, в отличие от TCP, образуются вибрионами во время пребывания в объектах окружающей среды [5].

Литические бактериофаги играют не только непосредственную [18], но и косвенную роль в горизонтальной передаче профага CTX, способствуя выходу из бактериальных клеток их геномной ДНК, которая может в присутствии хитина трансформироваться в другие клетки. Например, в опытах S.M. Udden и соавт. [19] штаммы серогруппы О141, содержащие CTX классического типа и неспособные образовывать инфекционные вирионы, успешно передавали профаг штаммам Эль-Тор в микрокосмах с хитиновым субстратом и О141-специфическим литическим бактериофагом JSF141B за счет трансформации, частота которой в 100 раз превышала таковую в отсутствие фага.

Наконец, CTXφ может инфицировать V. cholerae за счет взаимодействия с продуктами генов tolQRA [20], которые присутствуют у всех без исключения штаммов, поскольку их утрата приводит к резкому снижению жизнеспособности клеток, и такие мутанты, скорее всего, быстро погибают [21]. Несмотря на то что «нетрадиционная» (TCP-независимая) передача CTX может происходить вне организма человека, необходимым условием ее осуществления остается длительная циркуляция в объектах окружающей среды токсигенных штаммов-доноров инфекционных вирионов и/или геномной ДНК, что, как отмечено выше, не соответствует ситуации в России, где благодаря постоянному эпиднадзору и своевременным противоэпидемическим мероприятиям такие штаммы быстро элиминируются. Во всяком случае, мы ни разу не наблюдали повторного выделения токсигенных штаммов при последующих многократных исследованиях проб воды из мест их первичного обнаружения и других точек на той же территории [4].

В свете приведенных новых данных о множественности путей горизонтальной передачи CTX (см. рисунок) практически любой штамм может рассматриваться как «потенциально эпидемически опасный», и tcpA+ не обладают какими-либо существенными преимуществами, как реципенты этого профага.

В то же время данное заключение ни в коей мере не умаляет значимости TCP как мощного фактора адгезии, обеспечивающего колонизацию кишечника, предшествующую продукции холерного и других токсинов. Тем не менее, являясь ключевым адгезином холерных вибрионов, TCP, по всей видимости, так же «взаимозаменяемы», как и прочие факторы патогенности [21]. Поскольку ctx+-штаммы за крайне редким исключением содержат и VPI c генами tcp, для иллюстрации этой «взаимозаменяемости» мы приводим результаты анализа литературных данных о случаях диарей, вызванных ctx--штаммами, содержащими и не содержащими ген tcpA (табл. 2). Следует отметить, что возбудители почти всех перечисленных в таблице случаев (за исключением носительства) были выделены от госпитализированных больных с клиническими проявлениями острых кишечных инфекций различной степени тяжести – от умеренных до неотличимых от таковых при типичной холере (в связи с чем в зарубежной литературе за ними закрепился термин «холероподобная диарея» [22–26 и др.]), которая не коррелировала с присутствием tcpA. Напротив, иногда прослеживались ситуации, когда tcpA+-штаммы вызывали менее серьезные осложнения, чем tcpA-+-штаммы. Например, вспышка 2007 г. в Каменском районе Ростовской области [27] по сути явилась «вспышкой носительства», что вполне могло быть связано с продукцией представителями вызвавшего ее клона TCP, хотя аналогичная вспышка 1971 г. в Донецкой области Украины с преобладанием носительства была вызвана tcpA--клоном [28]. С другой стороны, несколько крайне тяжелых спорадических случаев в Украине (1991) [21] были вызваны tcpA--штаммами. Лишь в одном из описанных случаев множественной заболеваемости за счет инфицирования tcpA+-клоном (Южная Индия, 1993) симптоматика не отличалась от холерной, однако обусловившие ее факторы не были идентифицированы [23].

По всей видимости, патогенетический потенциал каждого штамма зависит от эффективности экспрессии генов ряда факторов патогенности, присутствующих в их геномах в разных сочетаниях. К ним относятся кодируемые генами коровой области профага pre-CTX Cep (core encoded pilin), Ace (accessory cholera enterotoxin) и Zot (zonula occludens toxin); высокомолекулярный цитотоксин RTX (MARTX); гемолизин/цитолизин HlyA; контакт-зависимые системы секреции третьего и шестого типов (T3SS и T6SS); цитотонический фактор Cef; гемагглютинин/протеаза (HA/P), сериновая протеаза (продукт гена VC1649) [38]; дополнительный фактор колонизации AcfB (продукт гена acfB в составе VPI) [39]; возможно (но не доказано), также cholix-токсин (ChxA) [38, 40].

Происхождение ctxAB-tcpA+-штаммов холерных вибрионов, выделяемых в России, не поддается точному определению. Чаще всего их связывают с заносом с других территорий. Вместе с тем не исключено, что в определенные периоды времени они способны персистировать в водоемах, составляя «минорную» часть популяции, как это имеет место в эндемичных странах [9]. TCP могут играть определенную роль в этой персистенции, поскольку участвуют в образовании и дифференциации биопленок на хитиновых поверхностях водных членистоногих (ракообразных, личинок насекомых) [41], хотя и не являются единственными и незаменимыми участниками этого события. В присутствии хитина в биопленках, где существуют благоприятные условия для обмена генетической информацией [42], также возможно приобретение VPI ctxAB-tcpA- -штаммами за счет трансформации, а в планктонной фазе – за счет неспецифической трансдукции фагом CP-T1 [17]. Как подчеркивалось выше, этот процесс в наших условиях ограничен недостатком генетического материала для горизонтального переноса, однако его крайне низкая вероятность все же не равна нулю. С другой стороны, получены экспериментальные доказательства того, что ctxAB-tcpA+- штаммы могут возникать из ctxAB+tcpA+ вследствие утраты профага CTX во время пребывания в водной среде [43], а также в кишечнике [44]. На наш взгляд, формирование ctxAB-tcpA+-штаммов происходит обоими путями, и для ответа на вопрос об их происхождении в каждом конкретном случае необходимо использовать методы с высокой дискриминирующей силой, такие, например, как сравнительный VNTR-анализ [45].


Литература


1. Krebs S.J., Taylor R.K. Protection and attachment of Vibrio cholerae mediated by the toxin-coregulated pilus in the infant mouse model. J. Bacteriol. 2011; 193(19): 5260–5270.

2. Silva A.J., Pham K., Benitez J.A. Hemagglutinin/protease expression and mucin gel penetration in El Tor biotype Vibrio cholerae. Microbiology 2003; 149: 1883–1891.

3. Балахонов С.В., Миронова Л.В., Куликалова Е.С., Урбанович Л.Я., Хунхеева Ж.Ю., Басов Е.А., Афанасьев М.В., Гольдапель Э.Г., Ганин В.С. Эпидемиологический надзор за холерой в Сибири и на Дальнем Востоке: результаты и направления совершенствования. Холера и патогенные для человека вибрионы. Материалы совещания специалистов Роспотребнадзора. Ростов-на-Дону, 2014; (27): 28–35.

4. Титова С.В., Кругликов В.Д., Ежова М.И., Водопьянов А.С., Архангельская И.В., Водопьянов С.О., Москвитина Э.А. Анализ динамики выделения и биологических свойств штаммов V. cholerae О1 El-Tor, изолированных из водных объектов на территории Ростовской области в 2003–2014 гг. Здоровье населения и среда обитания 2015; (2): 39–41.

5. Faruque S.M., Mekalanos J.J. Phage-bacterial interactions in the evolution of toxigenic Vibrio cholerae. Virulence 2012; 3(7): 556–565.

6. Гриднева Л.Г., Мусатов Ю.С., Громова Т.В., Пуховская Н.М., Белозерова Н.Б., Уткина О.М., Иванов Л.И., Ковальский А.Г., Миронова Л.В., Куликалова Е.С., Хунхеева Ж.Ю., Балахонов С.В. Результаты мониторинга и биологические свойства холерных вибрионов, изолированных из объектов окружающей среды на территории Хабаровского края. Пробл. особо опасных инф. 2014; (1): 121–125.

7. Смирнова Н.И., Челдышова Н.Б., Горяев А.А., Лозовский Ю.В., Кутырев В.В. Эволюция генома Vibrio cholerae: пути формирования атипичных штаммов. Пробл. особо опасных инф. 2008; (3): 3–12.

8. Pichel M., Rivas M., Chinen I., Martín F., Ibarra C., Binsztein N. Genetic diversity of Vibrio cholerae O1 in Argentina and emergence of a new variant. J. Clin. Microbiol. 2003; 41(1): 124–134.

9. Faruque S.M., Albert M.J., Mekalanos J.J. Epidemiology, genetics, and ecology of toxigenic Vibrio cholerae. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 1998; 62(4): 1301–1314.

10. Waldor M.K., Mekalanos J.J. Lysogenic conversion by a filamentous phage encoding cholera toxin. Science. 1996, 272:1910–1914.

11. Faruque S.M., Asadulghani, Saha M.N., Alim A.R., Albert M.J., Islam K.M., Mekalanos J.J. Analysis of clinical and environmental strains of nontoxigenic Vibrio cholerae for susceptibility to CTXφ: molecular basis for origination of new strains with epidemic potential. Infect. Immun. 1998; 66: 5819–5825.

12. Faruque S.M., Asadulghani, Rahman M.M., Waldor M.K., Sack D.A. Sunlight-induced propagation of lysogenic phage encoding cholera toxin. Infect. Immun. 2000; 68(8): 4795–4801.

13. Campos J., Martínez E., Suzarte E., Rodríguez B.L., Marrero K., Silva Y., Ledón T., del Sol R., Fando R. VGJ phi, a novel filamentous phage of Vibrio cholerae, integrates into the same chromosomal site as CTX phi. J. Bacteriol. 2003; 185(19): 5685–5696.

14. Das B., Bischerour J., Barre F.X. VGJφ integration and excision mechanisms contribute to the genetic diversity of Vibrio cholerae epidemic strains. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 2011; 108(6): 2516–2521.

15. Campos J., Martínez E., Izquierdo Y., Fando R. VEJφ, a novel filamentous phage of Vibrio cholerae able to transduce the cholera toxin genes. Microbiology 2010; 156(Pt 1): 108–115.

16. Boyd E.F., Waldor M.K. Alternative mechanism of cholera toxin acquisition by Vibrio cholerae: generalized transduction of CTXφ by bacteriophage CP-T1. Infect. Immun. 1999; 67(11): 5898–5905.

17. O’Shea Y.A., Boyd E.F. Mobilization of the Vibrio pathogenicity island between Vibrio cholerae isolates mediated by CP-T1 generalized transduction. FEMS Microbiol. Lett. 2002; 214(2): 153–157.

18. Choi S., Dunams D., Jiang S.C. Transfer of cholera toxin genes from O1 to non-O1/O139 strains by vibriophages from California coastal waters. J. Appl. Microbiol. 2010; 108(3): 1015–1022.

19. Udden S.M., Zahid M.S., Biswas K., Ahmad Q.S., Cravioto A., Nair G.B., Mekalanos J.J., Faruque S.M. Acquisition of classical CTX prophage from Vibrio cholerae O141 by El Tor strains aided by lytic phages and chitin-induced competence. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 2008; 105(33): 11951–11956.

20. Heilpern A.J., Waldor M.K. CTXφ infection of Vibrio cholerae requires the tolQRA gene products. J. Bacteriol. 2000; 182(6): 1739–1747.

21. Монахова Е.В. Факторы патогенности нехолерогенных штаммов Vibrio cholera. Автореф. дис. … д-ра биол. наук. Ростов-на-Дону, 2012.

22. Dutta D., Chowdhury G., Pazhani G.P., Guin S., Dutta S., Ghosh S., Ranjendran K., Nandy R.K., Mukhopadhyay A.K., Bhattacharya M.K., Mitra U., Takeda Y., Nair G.B., Ramamurthy T. Vibrio cholerae non-O1, non-O139 serogroups and cholera-like diarrhea, Kolkata, India. Emerg. Infect. Dis. 2013; 19: 464–467.

23. Saha P.K., Koley H., Mukhopadhyay A. K., Bhattacharya S.R., Nair G.B., RamaKrishnan S.T., Takeda Y. Nontoxigenic Vibrio cholerae O1 serotype Inaba biotype El Tor associated with a cluster of cases of cholera in Southern India. J. Clin. Microbiol. 1996; 34(5): 1114–1117.

24. Li F., Du P., Li B., Ke C., Chen A., Chen J., Zhou H., Li J., Morris J.G. Jr, Kan B., Wang D. Distribution of virulence-associated genes and genetic relationships in non-O1/O139 Vibrio cholerae aquatic isolates from China. Appl. Environ. Microbiol. 2014; 80(16): 4987–4992.

25. Sharma C., Thungapathra M., Ghosh A., Mukhopadhyay A.K., Basu A., Mitra R., Basu I., Bhattacharya S.K., Shimada T., Ramamurthy T., Takeda T., Yamasaki S., Takeda Y., Nair G.B. Molecular analysis of non-O1, non-O139 Vibrio cholerae associated with an unusual upsurge in the incidence of cholera-like disease in Calcutta, India. J. Clin. Microbiol. 1998; 36: 756–763.

26. Thompson C.C., Marin M.A., Dias G.M., Dutilh B.E., Edwards R.A., Iida T., Thompson F.L., Vicente A.C. Genome sequence of the human pathogen Vibrio cholerae Amazonia. J. Bacteriol. 2011; 193(20): 5877–5878.

27. Онищенко Г.Г., Ломов Ю.М., Москвитина Э.А., Подосинникова Л.С., Водяницкая С.Ю., Прометной В.И., Монахова Е.В., Водопьянов С.О., Телесманич Н.Р., Дудина Н.А. Холера, обусловленная Vibrio cholerae О1 ctxAB-tcpA+. Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 2007; (1): 23–29.

28. Монахова Е.В., Смоликова Л.М., Божко Н.В. ПЦР-детекция генов системы секреции третьего типа (TTSS) и других факторов патогенности/персистенции у холерных вибрионов различных серогрупп. Эпидемиол. и инфекц. бол. 2010; (6): 20–25.

29. Thompson C.C., Freitas F.S., Marin M.A., Fonseca E.L., Okeke I.N., Vicente A.C. Vibrio cholerae O1 lineages driving cholera outbreaks during seventh cholera pandemic in Ghana. Infect. Genet. Evol. 2011; 11(8): 1951–1956.

30. Coelho A., Andrade J.R.C., Vicente A.C.P, Salles C.A. New variant of Vibrio cholerae O1 from clinical isolates in Amazonia. J. Clin. Microbiol. 1995; 33(1): 114–118.

31. Lizárraga-Partida M.L., Quilici M.-L. Molecular analyses of Vibrio cholerae O1 clinical strains, including new nontoxigenic variants isolated in Mexico during the cholera epidemic years between 1991 and 2000. J. Clin. Microbiol. 2009; 47(5): 1364–1371.

32. Mahmud J., Rashed S.M., Islam T., Islam S., Watanabe H., Cravioto A., Alam M. Type three secretion system in non-toxigenic Vibrio cholerae O1, Mexico. J. Med. Microbiol. 2014; 63(Pt 12): 1760–1762.

33. Zhou H., Zhao X., Wu R., Cui Z., Diao B., Li J., Wang D., Kan B., Liang W. Population structural analysis of O1 El Tor Vibrio cholerae isolated in China among the seventh cholera pandemic on the basis of multilocus sequence typing and virulence gene profiles. Infect. Genet. Evol. 2014; 22: 72–80.

34. Li B., Tan H., Wang D., Ke B., Chen J., He D., Liu M., Ke C., Zhang Y. Etiologic characteristics of Vibrio cholerae in Guangdong province in 2009-2013. Zhonghua Liu Xing Bing Xue Za Zhi. 2014; 35(7): 825–831.

35. Nair G.B., Safa A., Bhuiyan N.A., Nusrin S., Murphy D., Nicol C., Valcanis M., Iddings S., Kubuabola I., Vally H. Isolation of Vibrio cholerae O1 strains similar to pre-seventh pandemic El Tor strains during an outbreak of gastrointestinal disease in an island resort in Fiji. J. Med. Microbiol. 2006; 55(11): 1559–1562.

36. Bubshait S.A., Al-Turki K., Quadri M.H., Fontaine R.E., Cameron D. Seasonal, non-toxigenic Vibrio cholerae O1 Ogawa infections in the Eastern Region of Saudi Arabia. Int. J. Infect. Dis. 2000; 4(4): 198–202.

37. Монахова Е.В., Божко Н.В. Изучение экспрессии контакт-зависимых систем секреции холерными вибрионами на модели Dictyostelium discoideum. Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 2010; (4): 89–92.

38. Монахова Е.В. Стратегия вирулентности холерных вибрионов и пути ее реализации. Пробл. особо опасных инф. 2013; (4): 60–68.

39. Chaparro A.P., Ali S.K., Klose K.E. The ToxT-dependent methyl-accepting chemoreceptors AcfB and TcpI contribute to Vibrio cholerae intestinal colonization. FEMS Microbiol. Lett. 2010; 302(2): 99–105.

40. Lugo M.R., Merrill A.R. The father, son and cholix toxin: the third member of the DT group mono-ADP-ribosyltransferase toxin family. Toxins 2015; (7): 2757–2772.

41. Reguera G., Kolter R. Virulence and the environment: a novel role for Vibrio cholerae toxin-coregulated pili in biofilm formation on chitin. J. Bacteriol. 2005; 187(10): 3551–3555.

42. Хмель И.А., Метлицкая А.З. Quorum sensing регуляция экспрессии генов – перспективная мишень для создания лекарств против патогенности бактерий. Мол. биол. 2006; 40(2): 195–210.

43. Смирнова Н.И., Кульшань Т.А., Челдышева Н.Б., Осин А.В. Структурные и функциональные изменения генома возбудителя холеры в водной среде. Эпидемиол. и инфекц. бол. 2007; (5): 22–27.

44. Kamruzzaman M., Robins W.P., Bari S.M., Nahar S., Mekalanos J.J., Faruque S.M. RS1 satellite phage promotes diversity of toxigenic Vibrio cholerae by driving CTX prophage loss and elimination of lysogenic immunity. Infect. Immun. 2014; 82(9): 3636–3643.

45. Водопьянов А.С., Водопьянов С.О., Сучков И.Ю., Мишанькин Б.Н. Холера. Штаммы – VNTR. Свидетельство о государственной регистрации базы данных № 2007620389, 2007.


Об авторах / Для корреспонденции


Для корреспонденции:
Монахова Елена Владимировна – д-р биол. наук, вед. науч.сотр. Ростовского-на-Дону противочумного института Роспотребнадзора
Адрес: 344002, Ростов-на-Дону, ул. М. Горького, д. 117/40
Телефон: +7(863) 240-91-33
Е-mail: monakhova_ev@antiplague.ru

Сведения об авторах:
Титова Светлана Викторовна – канд. мед. наук, дир. Ростовского-на-Дону противочумного института Роспотребнадзора; titova_sv@antiplague.ru


Похожие статьи


Бионика Медиа